1. 什么是western blot?
答：WB又稱免疫印記法.是將生物大分子物質通過不同途徑轉移到固相載體的過程。

2. western blot 有什么優(yōu)點？
答：靈敏，可達ng級，用Ecl顯色法理論上可達pg 級。方便，特異性高。

3. western blot 的具體步驟是什么？
答：一. 制樣（以提動物組織總蛋白為例），
1） 組織洗滌后加入3 倍體積PBS，0℃研磨。
2） 加入5×STOP buffer
3） 180W, 6mins，0℃超聲波破碎
4） 5000rpm，5mins 離心，取上清。
5） 加入REB(9.5ml加入0.5ml)，溴酚藍（9.5ml加入0.5ml）
6） 煮沸，10min
7） 分裝，于-20℃保存，用時取出，直接溶解上樣。

二． 電泳（SDS-PAGE）
建議欲檢測抗原10－30kd, 用15％膠；30－100kd, 用10％膠；100－200kd，用7.5
％膠。
1）配膠（one piece）A.分離膠。單位：ml。Total: 8ml
7.5％ 10％ 15%
2×Sep. buffer 4 4 4
30％ Gel.sol 2.0 2.7 4
ddH2O 1.9 1.2 0
TEMED 8ul 8ul 8ul
10%APS 80ul 80ul 80ul
B. 濃縮膠。單位：ml。Total: 3.5ml
3％
2×Stacking. buffer 1.7
30％ Gel.sol 0.35
ddH2O 1.4
TEMED 5ul
10%APS 50ul
2)點樣。上樣蛋白量不應超過30ug/mm2. (載荷面即：如果你的膠槽是5mm×1mm, 則
載荷面為：1mm×5mm=5mm2)，
3）電泳。開始用80V電壓，但是當溴酚藍至分離膠時，用100-120V電壓。
4）轉移（一塊膠）。
A.半干法。
a. 取六張濾紙（Bio-Rad，1mm），三張做上層濾紙，三張做下層。其中，
上層濾紙一定要比較干凈，無污染。用前都用Transfer buffer 浸泡至少
五分鐘。
b. 準備硝酸纖維素薄膜，用時先用甲醇浸泡1-3min.倒掉后，再用Transfer
buffer 浸泡。
c. 做三明治。陽極上鋪三張下層濾紙，再浸泡過的膜，再鋪膠，然后鋪三
實驗方法互助區(qū)——蛋白區(qū)
張上層濾紙，最后鋪上三張上層濾紙，蓋上陰極。注意每層之間不能有
氣泡。膜上用鉛筆畫出膠的邊緣。標上下。
d. 轉移，0.8mA/cm2-3mA/cm2. 經驗是：100kd-200kd，用2mA/cm2，2hrs;
30-100kd用1.0-2.0mA/cm2，40mins-1.5h；10kd-30kd％用0.5-0.8mA/cm2，
15mins-40mins.
B.濕法。
a. 取四張濾紙，兩張做上層濾紙，兩張做下層。其中，上層濾紙一定要比較
干凈，無污染。
b. 準備硝酸纖維素薄膜，用時先用甲醇浸泡1-3mins.倒掉后, 再用Transfer
buffer 浸泡。
c. 做三明治。
e. 轉移�？乖�≥100kd, 先28V轉移1h, 然后84V轉移14-16h, ≤100kd， 則
63V轉移4-16h.

三封閉：5％牛奶4℃封閉過夜，或RT 1hr.

四第一步反應：5％牛奶或2％BSA稀釋抗體（稱一抗），稀釋比例按抗體說明,室溫
孵育1hr，

五洗滌：TBST 洗5 mins 3-5 次。

六第二步反應：將膜跟5％牛